Expérimentation animale
• Entretien et élevage de lignées murines consanguines, congéniques, et transgéniques,
• Injection par voies sous cutanée, intrapéritonéale, intraveineuse, intracardiaque, intramusculaire, intramammaire, dans sinus rétroorbital
• Petite chirurgie sous anesthésique (dénervation, implantation orthotopique…) et prélèvements d’échantillons (sang, tissues/organes, tumeurs)
• Développement de modèles de pathologies cancéreuses (modèles xénogreffes, allogreffes, orthotopiques…), musculo-squelettiques (souris transgéniques, test d’efforts musculaires…), neuronales (souris transgéniques, modèles neurodégéneratifs et avec déficits cognitifs…)
• Imagerie optique (bioluminescente et fluorescente) et ultrasonore (échographie, doppler, photoacoustique)
• Modèles chez Drosophila melanogaster de maladies neurodégénératives et de tumeurs cérébrales
Biologie cellulaire :
• Culture de cellules de mammifères, de levures et de bactéries.
• Cultures et expérimentations avec taux d’oxygène contrôlé (normoxie, physioxie, hypoxie)
• Construction de modèles 3D d’organoïdes plus ou moins complexes
• Transfection cellulaire (ADN, ARNm, ARN interférents, leurres moléculaires)
• Microinjection
• Perméabilisation membranaire induite par des peptides fusiogènes
• Cytométrie en flux multifluorescences, immunomarquages, FISH, étude du cycle cellulaire, du flux calcique, analyses multiplexes
• Tri cellulaire multifluorescences et clonage cellulaire
• Microscopie confocale, imagerie spectrale, vidéomicroscopie statique et en flux
• Etudes de la dynamique cellulaire (angiogenèse, recrutement cellulaire, migration)
• Tests de viabilité cellulaire, d’entrée en apoptose.
• Etude de l’endocytose et du trafic intracellulaire,
• Evaluation de la pigmentation de la peau
• Evaluation du stress oxydant
Biologie moléculaire :
• Clonage, construction et préparation de plasmides, préparation d’ARN messager,
• Northern blot, hybridation in-situ
• PCR semi-quantitative et quantitative en temps réel
• Mutagenèse dirigée
• Génétique moléculaire de la levure Saccharomyces cerevisiae et apparentées
• Génétique de la Drosophile
• Microarrays (microRNAs, mRNAs)
Biochimie :
• Expression et purification de protéines recombinantes (cellules mammifères, levures, bactéries)
• Purification et caractérisation de protéines et glycoprotéines
• Gels SDS-PAGE, Western-blot, immunoprécipitations.
• Etude des interactions protéine-protéine par : double-hybride, co-purification, co-immunoprécipitation, Résonance Plasmonique de Surface, TAP-tag, immunoprecipitation de Chromatine et d’ARNm (ChIP et RIP)
Chimie :
• Synthèse de polymères
• Synthèse et chimie fine de l’ADN
• Préparation de liposomes
• Taille et potentiel zêta de complexes acides nucléiques/vecteurs synthétiques
Biophysique :
• Irradiation Ultraviolette (UVA, UVB, UVA+UVB)
• Spectroscopie de fluorescence
• Bioluminescence : mesure de l’expression de la luciférase
• BRET, FRET, TR-FRET, AlphaScreenTM : étude des interactions moléculaires (protéine/protéine, protéine/ligand, récepteur/messager) et de la transduction du signal