“Liste des ressources humaines et techniques du groupe

 


Membres de l’équipe

Responsables
AUCAGNE Vincent Chargé de recherche CNRS, Coordinateur de l’équipe  @
CADENE Martine Directrice de recherche CNRS, Coordinatrice de l’équipe   @

Chercheurs et enseignants-chercheurs
BEAUFOUR Martine Maître de conférences, IUT d’Orléans   @
BONMATIN Jean-Marc Chargé de recherche CNRS   @
BOUDVILLAIN Marc Directeur de recherche CNRS   @
CADENE Martine Directrice de recherche CNRS   @
CASTAING Bertrand Directeur de recherche CNRS   @
DELMAS Agnès Directrice de recherche CNRS   @
GARNIER Norbert Maître de conférences de l’Université d’Orléans   @
GUERIN Martine Maître de conférences de l’Université d’Orléans  @
JOUVENSAL Laurence Maître de conférences de l’Université d’Orléans  @
KEITA-PAQUET Françoise Chargée de recherche CNRS  @
LANDON Céline Chargée de recherche CNRS   @
LOTH Karine Maître de conférences de l’Université d’Orléans   @
PILLER Véronique Chargée de recherche CNRS   @

Ingénieurs et Techniciens
BERTRAND Marylène Ingénieur de recherche CNRS   @
COLAS Cyril Ingénieur de recherche CNRS (50% FR2708)   @
COSTE Franck Ingénieur de recherche CNRS   @
EVENO Eric Ingénieur de recherche CNRS @
GABANT Guillaume Ingénieur d’études CNRS   @
GOFFINONT Stéphane Ingénieur d’études CNRS   @
LELIEVRE Dominique Ingénieur de recherche CNRS  @
MADINIER Jean-Baptiste Ingénieur d’études CNRS @
MARCEAU Philippe Ingénieur d’études CNRS @
MEUDAL Hervé Ingénieur d’études CNRS @
NADAN Virginie Technicienne CNRS   @
SCHWARTZ Annie Ingénieur d’études CNRS   @

Doctorants
ABBOUD Skander @
CROS Julien @
LARGILLIERE Justine @
NADIRAS Cédric   @
WACQUIEZ Alan @

Personnels sous contrat
DELALEAU Mildred Ingénieur de recherche CDD  @

 

Principales techniques

• Biologie moléculaire ; mutagénèse ; expression et purification de protéines ; transcription in vitro ; Purification d’ADN et d’ARN ;
• Biochimie ; sondes chimiques et enzymatiques ; footprinting d’ADN et d’ARN ; EMSA ; cinétique enzymatique (transitoire, état stationnaire)
• Spectrométrie de Masse
• Cristallographie aux rayons X ; DLS ; SAXS
• RMN en phase liquide
• Synthèse peptidique en phase solide ; Chimie organique ; ligation chimique
• Chromatographie en phase liquide (HPLC, FPLC)
• Modélisation moléculaire ; Simulations numériques de dynamique moléculaire

Principaux équipements

• RMN 400, 600 (avec passeur d’échantillons), et 700 (avec cryosonde) MHz
• Spectromètres de masse MALDI-TOF ; ESI-Trap MS couplée à la nano-uHPLC ; UHR-Q-TOF avec module ETD et UHR-Q-TOF avec module CID (50% FR2708)
• Hotte stérile à flux laminaire
• Robot de cristallisation et générateur de rayons X.
• Boite à gants pour cristallogenèse en atmosphère inerte
• Système de pipetage automatisé
• Synthétiseur de peptides
• Imageurs moléculaires (phosphorimaging ; fluorescence)
• Instruments de cinétique rapide (chemical quench flow ; stopped flow)
• Systèmes HPLC et FPLC
• Clusters PC Linux pour la simulation numérique