article paru dans "20 minutes" le 02 mars 2017
Des oligonucléotides ADN en double brin et linéaires dit à activité leurre moléculaire constituent une classe de petits acides nucléiques à visée thérapeutique. Ils sont capables de se lier spécifiquement à une cible protéique avec une affinité forte, de la séquestrer et en conséquence d’invalider sa fonction. Cette stratégie est utilisée pour inhiber chirurgicalement la transcription de gènes impliqués dans plusieurs pathologies humaines (maladies inflammatoires et cardiovasculaires, cancer) en inhibant différents facteurs de transcription cible comme NF-ĸB. Plusieurs essais cliniques ont conclu à un manque d’efficacité en partie due à une faible biostabilité de l’oligonucléotide leurre qui est digéré par des exonucléases sériques et cellulaires à partir de ses extrémités libres. La recherche s’est alors orientée vers une fonctionnalisation chimique des oligonucléotides linéaires pour offrir une meilleure biostabilité mais au détriment d’une activité de piégeage moins grande. Notre approche consiste à circulariser l’oligonucléotide leurre pour le rendre résistant aux exonucléases sans aucune modification chimique. Cependant la rigidité intrinsèque de la double hélice d’ADN restait une barrière pour produire des quantités suffisantes d’oligonucléotides circulaires (minicercle) de moins de 250 paires de base et permettre de tester leur activité biologique. Grâce à une approche d’ingénierie d’acides nucléiques se situant à l’interface de la physico-chimie, de la nanotechnologie de l’ADN, de la vectorologie chimique des acides nucléiques et de la biologie cellulaire, nous avons mis au point une nouvelle technique de production quantitative et versatile de minicercles d’ADN et fait la preuve de concept in cellulo d’une activité leurre moléculaire d’un minicercle dirigé contre NF-ĸB. Ce travail ouvre maintenant la voie au développement d’une nouvelle classe d’oligonucléotides circulaires d’ADN à activité leurre moléculaire.
Production of DNA minicircles less than 250 base pairs through a novel concentrated DNA circularization assay enabling minicircle design with NF-ĸB inhibition activity.
Thomas Thibault, Jeril Degrouard, Patrick Baril, Chantal Pichon, Patrick Midoux and Jean-Marc Malinge
Nucleic Acids Research – accepted 21 octobre 2016 – doi: 10.1093/nar/gkw1034
Retrouvez dans CNRS Innovation l’article consacré à la collaboration entre le CBM, le PRC et l’ICOA et une société de biotechnologies pour synthétiser des analogues plus performants et les tester sur le terrain.
Decourt C., Robert V., Anger K., Galibert M., Madinier J.-B., Liu X., Dardente H., Lomet D., Delmas A. F., Caraty A., Herbison A. E., Anderson G. M., Aucagne V. and Beltramo M.
A synthetic kisspeptin analog that triggers ovulation and advances puberty.
Scientific Reports, 6 , 26908 – doi : http://dx.doi.org/10.1038/srep26908
Contacts :
Vincent Aucagne – Centre de biophysique moléculaire
Massimiliano Beltramo – Physiologie de la reproduction et des comportements
La visualisation de l’activité des enzymes, impliquées dans de nombreux processus physiologiques et pathologiques, doit permettre de faire à terme des diagnostics beaucoup plus précoces. Deux équipes du CBM(*), en collaboration avec des chercheurs de l’ICSN (Gif-sur-Yvette), ont mis au point un prototype d’agents de contraste dédié à la détection d’une activité enzymatique grâce à trois modes d’imagerie complémentaires : l’Imagerie par Résonance Magnétique (IRM) pondérée en T1, l’IRM pondérée par l’échange chimique (CEST) et l’imagerie optique dans le domaine du visible et du proche infra-rouge. La combinaison de ces trois techniques permet d’obtenir des informations plus sûres.
He J., Bonnet C. S., Eliseeva S. V., Lacerda S., Chauvin T., Retailleau P., Szeremeta F., Badet B., Petoud S., Tóth E. and Durand P.
Prototypes of Lanthanide(III) Agents Responsive to Enzymatic Activities in Three Complementary Imaging Modalities: Visible/Near-Infrared Luminescence, PARACEST- and T1-MRI.
Journal of the American Chemical Society(*), 2016, 138 (9) 2913-2916 – doi : 10.1021/jacs.5b12084
(*) L’illustration de la couverture est issue des travaux des équipes du CBM.
Cet article est signalé par l’Institut de Chimie du CNRS sur son site et diffusé dans la lettre En direct des labos .
[Victor P. Terrier, Hélène Adihou, Mathieu Arnould, Agnès F. Delmas & Vincent Aucagne
A straightforward method for automated Fmoc-based synthesis of bio-inspired peptide crypto-thioesters
Chemical Science 23 septembre 2015->http://pubs.rsc.org/en/content/articlelanding/2015/sc/c5sc02630j#!divAbstract]